Clarke固定液

PAGE连续蛋白上样缓冲液，科研专门***科研实验中试剂取用应注意事项：1. 固体试剂的取用:取用固体药品时药匙必须是干净的.一支药匙不能同时取用两种或两种以上的试剂.药匙每取完一种试剂后都必须用干净的纸擦拭干净,以备下次使用.药匙的两端为大小两匙,取固体量较多时用大匙,较少时用小匙2. 取用不定量(较多)液体——直接倾倒a. 瓶塞必须倒放在桌面上【防止药品腐蚀实验台或污染药品】；b. 直接倾倒时瓶口必须紧挨试管口，试管45度，并且缓缓地倒【防止药液损失】；c. 贴标签的一面必须朝向手心处【防止药液洒出腐蚀标签】。检测试剂盒稀释时可在水浴中加温助溶。Clarke固定液

检测试剂盒标本保存方法：标本管中增加物质的影响。抗凝剂、酶抑制剂及快速分别血清的分别胶等均对测定有必定烦扰作用。标本溶血。由于各种人为原因引起的标本溶血，均可因红细胞破坏溶解时释放出很多具有过氧化物酶活性的血红蛋白，在以辣根过氧化物酶为符号的测定中，会导致非特异性显色，检测试剂盒烦扰测定作用。为打败上述烦扰作用，标本搜集时有必要留意避免溶血。标本保存不妥。 在冰箱中保存过久的标本，血清中IgG可聚组成多聚体、AFP可构成二聚体，在间接法测定中会导致本底过深、乃至形成假阳性；标本放置时刻过长（如一日以上），有时抗原或抗体免疫活性削弱，亦可出现假阴性。为打败上述烦扰，测定的血清标本宜为新鲜搜集；如不能立即测定，5天内测定的血清标本可存放于4℃，1周后测定的血清标本应低温冻存；冻存后融解的标本，蛋白质部分浓缩，分布不均，应充沛混合后再测定，但混匀时应轻柔，不行激烈振荡。潘氏试剂(Pandy)BMC原代分离步骤：吸取稀释血液，在离分层液上方1cm处，沿试管壁徐徐加入。

液体固体试剂正确取用试剂的方法过程：取用试剂后应立即盖上原来的瓶塞，把试剂瓶放回原处，并使试剂标签朝外，应根据所需用量取用试剂，不必多取，如不慎取出了过多的试剂，只能弃去，不得倒回或放回原瓶。以免沾污试剂。 从滴瓶中取用少量试剂。瓶上装有滴管的试剂瓶称作滴瓶。滴管上部装有橡皮头，下部为细长的管子。使用时，提起滴管，使管口离开液面，用手指紧捏滴管上部的橡皮头医学|教育网搜集整理，以赶出滴管中的空气，然后把滴管，伸入试剂瓶中，放开手指，吸入试剂。再提起滴管将试剂滴入试管或烧杯中。

试剂抗干扰作用的合理性有些液体双试剂，其实质并不真正具备抗干扰的能力而只是解决了试剂的液体化和稳定性问题。如，ALT检测试剂盒中，NADH在pH7.5~7.8水溶液中极不稳定，在pH>8.7时才能稳定保存。因此，为了保证试剂稳定性，液体双试剂的R1需要维持pH>8.7，但此时LDH活性很大程度下降，就失去消除内源性酸的功能，只有加入试剂R2后，反应混合液的pH下降至LDH适pH，在经过延迟时间60 S后，才能消除内源性酸的干扰。再如，Tfinder反应中抗Vc干扰问题：由于维生素c易氧化，样品中Vc会竞争反应生成的过氧化氢，而产生负干扰。因此，在试剂R1中加入抗坏血酸氧化酶，这种方法是有效的，但不一定有很大的意义。定量取用液体时，用量筒或移液管。

检测试剂盒实验经验分析：洗板时，每次洗液加入后，应静置1分钟，使清洗更加彻底。没有洗板机时，倒去液体后，要将酶标板在报纸或毛纸上用力拍干（报纸就免了吧！）。洗液不够时，可用蒸馏水自行配制PH7.4，0.02M的磷酸缓冲液，加入0.1%的吐温20作为洗液。加入1/1000的叠氮钠后可长期保存（洗液先用现配不费多少事的）。底物是光敏感的，要在临用前现配（同前，避光！）。检测前，要打开酶标仪，使之稳定10分钟以上。底物有一定的毒性，终止液对皮肤有腐蚀性，应尽量避免接触（终止液为硫酸，小心毁容）。待检样品要澄清，否则会影响结果。温浴时间应遵守检测试剂盒规定。应尽量做双孔实验，这样才能保证数据的准确性。为保证溶质尽可能全部转移到容量瓶中，应用蒸馏水洗涤烧杯和玻璃棒并将每次洗涤后的溶液都注入到容量瓶中。RPMI 1640 Medium

丁胺卡那霉素给药说明：配制静脉用药时，每500mg加入氯化钠注射液。Clarke固定液

检测试剂盒的要点有哪些？在储存及孵育过程中避免将试剂暴露在强光中。一切试剂瓶盖须盖紧以避免蒸腾和污染，试剂避免受到微生物的污染，由于蛋白水解酶的干扰将导致出现过错的成果。当心汲取试剂并严格遵守给定的孵育时刻和温度。请注意在汲取标本 / 标准品，酶结合物或底物时，*个孔与后一个孔加样之间的时刻距离假如太大，将会导致不同的 “预孵育”时刻，从而明显地影响到测量值的准确性及重复性。而且，洗涤不充分将影响实验成果。检测试剂盒保存：部分试剂保存于-20℃，部分试剂保存于2-8℃，详细以标签上的标明为准。Clarke固定液